441

17 менее 0,1 мкм). Для получения таких срезов, а также для сохранения тонкой структуры изучаемых объектов были разработаны специаль- ные методы фиксации, заливки и ультратомии. Во-вторых, обычные красители оказались непригодны для электронной микроскопии, и препараты контрастируют солями тяжёлых металлов (свинец, осмий, уран). В-третьих, невозможно элек- тронно-микроскопическое изуче- ние живых клеток. Сканирующий электронный микроскоп позволяет изучать по- верхность объекта. Тонкий пучок электронов, попадая на поверх- ность, вызывает испускание вто- ричных электронов, поток которых улавливается специальным датчи- ком. Для изучения поверхности объ- ектов (например, белков плазма- тических мембран) используют метод замораживания–скалывания–травле- ния. Этот метод был разработан в 1957 г. Р.Л. Стиром для изучения на- тивных (нефиксированных) биологиче- ских объектов. Клетки, не фиксируя, быстро за- мораживают. Полученный образец при температуре –100 С° в вакууме раскалывают специальным ножом. На поверхности скола остаются «от- печатки» поверхности клеточных структур. Затем образец подвергают травлению – возгонке льда в вакууме. Это освобождает изучаемые струк- туры от «льдинок» и делает их более чёткими. Полученную поверхность напыляют парами металла. Части- цы металла формируют «отпеча- Рис. 3. Устройство электронного ми- кроскопа : 1 – катод; 2 – колонна микро- скопа, в которой формируется глубокий вакуум; 3 – конденсорная магнитная линза; 4 – магнитная линза объекти- ва; 5 – проекционная магнитная линза; 6 – изображение объекта. Обратите вни- мание на принципиальное сходство этого прибора со световым микроскопом.